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細(xì)胞培養(yǎng)注意事項(xiàng)(入門(mén)級(jí))

更新時(shí)間:2020-03-18      點(diǎn)擊次數(shù):5238

細(xì)胞培養(yǎng)注意事項(xiàng)(入門(mén)級(jí))

總的原則:無(wú)菌操作、保證細(xì)胞培養(yǎng)環(huán)境的穩(wěn)定性

按時(shí)間順序整理

1、  細(xì)胞房和生物安全柜(或超凈工作臺(tái))先開(kāi)紫外照射30min。作用:對(duì)環(huán)境滅菌(空氣)。(備注:如果著急,至少也要開(kāi)15分鐘)

在做實(shí)驗(yàn)之前考慮好需要哪些物品。開(kāi)始照射之前,將所需要用到的物品都放到生物安全柜(或超凈工作臺(tái))里面。

常用移液槍或電動(dòng)移液器等,需要在工作臺(tái)上放置一套設(shè)備。

細(xì)胞培養(yǎng)箱一般都已經(jīng)調(diào)整好。定期留意一下二氧化碳是否足夠。不夠及時(shí)更換。

 

2、  顯微鏡需要定期消毒酒精擦拭。注意:顯微鏡一般都放在細(xì)胞房。

 

3、  進(jìn)入實(shí)驗(yàn)之前,首先給自己帶上拖鞋、頭套,口罩,實(shí)驗(yàn)服,手套(手套帶雙層)。注意:手套要將袖口套進(jìn)去。實(shí)驗(yàn)服、拖鞋是細(xì)胞房。

 

4、  開(kāi)始操作之前先觀察細(xì)胞。

首先觀察細(xì)胞培養(yǎng)液的顏色?,F(xiàn)在的細(xì)胞培養(yǎng)液通常都放有酸堿指示劑(絕大部分是酚紅)。細(xì)胞在培養(yǎng)生長(zhǎng)過(guò)程中,不斷在培養(yǎng)液上清中累積酸性物質(zhì),時(shí)間長(zhǎng)了,培養(yǎng)液變?yōu)辄S色(同時(shí)培養(yǎng)液中營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)耗盡)。

其次鏡下觀察細(xì)胞的生長(zhǎng)狀態(tài)是否良好,是否需要傳代。如果生長(zhǎng)狀態(tài)不好,需要對(duì)培養(yǎng)液進(jìn)行調(diào)整(一般是加大血清濃度)。過(guò)于密集出現(xiàn)大片融合或太密集而導(dǎo)致細(xì)胞脫落,則進(jìn)行傳代。

如果長(zhǎng)勢(shì)良好,且細(xì)胞培養(yǎng)液顏色未發(fā)生變化,可以酌情進(jìn)行1/2、 1/3、1/4換液,也可以全換液。總之,視細(xì)胞生長(zhǎng)情況而定。

 

5、  細(xì)胞培養(yǎng)預(yù)準(zhǔn)備:

首先是準(zhǔn)備各種溶液。

1:是配制溶液過(guò)程中要用到的水。水用純水,高壓滅菌之后,再去內(nèi)毒素。去內(nèi)毒素方法很多,簡(jiǎn)單可以放在烘箱180度3小時(shí)?;蛘哌^(guò)去內(nèi)毒素的柱子后,高壓滅菌。

第二,各種溶液滅菌:

抗生素用去內(nèi)毒素水配制后,直接過(guò)濾除菌(過(guò)0.22u濾頭)??梢杂靡淮涡詿o(wú)菌注射器過(guò)一次性0.22u濾頭。

現(xiàn)在用的培養(yǎng)液,如果是商業(yè)化液體培養(yǎng)基,不用處理。如果是粉末,需要用去內(nèi)毒素水在生物安全柜(或超凈工作臺(tái))進(jìn)行配制,再過(guò)濾除菌。可以先配濃縮液(如10×),過(guò)濾除菌后。再用滅菌去內(nèi)毒素水稀釋成1×培養(yǎng)液。

第三,*培養(yǎng)液的配制:

培養(yǎng)液加上合適比例的血清即可。但血清一般保存于-20℃,一般解凍是放在4℃冰箱解凍,耗時(shí)長(zhǎng),而且必須解決*之后,才能進(jìn)行*培養(yǎng)基的配制。所以要提前幾個(gè)小時(shí)就將血清從-20℃轉(zhuǎn)入4℃,以期*解凍。當(dāng)然如果這一次就需要用完的話(是指用這些血清配制的培養(yǎng)液都用完),也可以放到37℃解凍。

第四,醉重要的是保證過(guò)程中無(wú)菌。

液體必須要分裝。無(wú)論過(guò)程中用到的培養(yǎng)液、胰酶、血清、PBS、生理鹽水、抗生素盡量分裝。分裝是為了防止污染。如果操作有誤,僅能威脅到其中一支,而非整個(gè)。

培養(yǎng)液、血清、PBS、生理鹽水分裝為20mL、50mL或100mL/管

胰酶、抗生素可分裝為1mL/管。

分裝先于細(xì)胞操作

第五,操作之前,培養(yǎng)液先放到37度的細(xì)胞培養(yǎng)箱里復(fù)溫。原因:盡量減少對(duì)細(xì)胞的刺激。低溫對(duì)于細(xì)胞也是一個(gè)刺激因素。

第六,操作之前,大腦先過(guò)一遍此次操作所需要用到的所有用具。將所有用具先放到無(wú)菌臺(tái)面上。減少拿入拿出的動(dòng)作,保證無(wú)菌。(如果萬(wàn)一發(fā)現(xiàn)少拿了什么,也不要緊,再加上就是。如果是槍頭盒、移液管等用具,先用消毒酒精噴一下)。

第七,操作之前,帶著的手套先噴消毒酒精。然后再進(jìn)入工作臺(tái)。等一分鐘,等手套上的酒精揮發(fā)之后再進(jìn)行操作。

 

6、  細(xì)胞培養(yǎng)操作過(guò)程:

注意無(wú)菌。無(wú)論哪一管液體,開(kāi)蓋后盡量立即關(guān)上(如果有幾瓶都需要開(kāi)的,也注意,可以虛蓋)。蓋子向上放。操作時(shí)不要從開(kāi)蓋的容器上方經(jīng)過(guò)。另外,無(wú)菌臺(tái)面上擺放的各種東西,是一字?jǐn)[開(kāi),平行于自己。盡量不要前后重疊

細(xì)胞操作中所用的所有耗材試劑都是細(xì)胞培養(yǎng)。一般都以一次性耗材居多。1ML槍頭為加長(zhǎng)型培養(yǎng)槍頭。移液管亦有10mL一次性無(wú)菌移液管

(1)細(xì)胞換液:

培養(yǎng)皿/瓶用槍頭或移液管吸去原培養(yǎng)液,加入新培養(yǎng)液。

(2)細(xì)胞傳代:

傳代之前先觀察,細(xì)胞是否密集,是否開(kāi)始融合。一般融合達(dá)到70-80%就可以傳代。早點(diǎn)傳代也可以。

如果是貼壁生長(zhǎng)的細(xì)胞:

1)  培養(yǎng)皿/瓶用槍頭或移液管吸去原培養(yǎng)液;

2)  無(wú)菌PBS或無(wú)菌生理鹽水洗滌3次(按培養(yǎng)體積加入);

3)  加入適量胰酶消化適當(dāng)時(shí)間(一般胰酶為0.25%;9cm/10cm培養(yǎng)皿和25cm培養(yǎng)瓶,一次加入1mL胰酶。消化時(shí)間視細(xì)胞類(lèi)型等多種情況綜合考慮,一般如果是細(xì)胞株,非原代培養(yǎng),消化1-2分鐘足矣);

4)  用槍頭吹打數(shù)十次(視細(xì)胞類(lèi)型而定。一般細(xì)胞株30-50次吧,耗時(shí)一般2分鐘左右);

5)  加入適量體積*培養(yǎng)基終止胰酶消化(如果是9cm/10cm培養(yǎng)皿和25cm培養(yǎng)瓶,可以加入1mL*培養(yǎng)基;現(xiàn)在培養(yǎng)瓶(皿)里有2mL溶液)。

6)  現(xiàn)在可以將溶液進(jìn)行分瓶(2mL)。如果是細(xì)胞株,直接均分到兩個(gè)培養(yǎng)瓶(皿)里。如果是原代培養(yǎng),可以根據(jù)消化時(shí)間來(lái)對(duì)細(xì)胞進(jìn)行分離;因此可以將溶液(2mL)都轉(zhuǎn)入新的培養(yǎng)瓶(皿)。

7)  將兩個(gè)培養(yǎng)瓶(皿)補(bǔ)足*培養(yǎng)基到正常體積(果是9cm/10cm培養(yǎng)皿和25cm培養(yǎng)瓶,為5mL*培養(yǎng)液)

8)  鏡下觀察。剛剛傳代細(xì)胞還沒(méi)貼壁,懸浮在溶液中,呈圓形。一般2h之內(nèi)會(huì)貼壁,如果已經(jīng)貼壁,根據(jù)細(xì)胞類(lèi)型有不同的形態(tài),但通常都不是圓形。

9)  鏡下觀察無(wú)誤之后,再放入細(xì)胞培養(yǎng)箱。培養(yǎng)瓶(皿)放入之前,可以用消毒酒精先擦一下。

10)  傳代之后,第二天細(xì)胞換液一次。當(dāng)然,也可以視情況而定。

 

7、  收拾工作臺(tái)。物品歸位,倒出垃圾。再開(kāi)紫外照射30min

 

8、  其它注意事項(xiàng):

1:,經(jīng)常觀察。是每天都顯微鏡下看一看,確定細(xì)胞狀態(tài)。然后該換液換,該傳代傳,不用理會(huì)的就原樣放回去。如果好幾天都不想理會(huì),可以放不*培養(yǎng)基,或者低血清濃度的培養(yǎng)液,維持細(xì)胞生存,但不增殖。

第二,是否加抗生素。這個(gè)視情況而定。細(xì)胞培養(yǎng)過(guò)程中,是要求盡量少添加不相關(guān)的雜質(zhì)??股貙?duì)于細(xì)胞來(lái)說(shuō),也是一種負(fù)擔(dān)。但如果環(huán)境比較污染,直接添加好了。好比沒(méi)病不用吃藥,感冒了還是要吃藥;嬰兒沒(méi)病但還是要打疫苗。

第三,胎牛血清的解凍。血清一般保存于-20℃,要放在4℃冰箱解凍,耗時(shí)長(zhǎng),500mL要好幾個(gè)小時(shí),我們經(jīng)常是頭天離開(kāi)實(shí)驗(yàn)室之前放到4℃冰箱,過(guò)夜。所以經(jīng)常分裝成10mL或者20mL。這樣,上午放到4℃冰箱,下午就可以用了。

第二,是否一定要細(xì)胞房。以及是否要*嚴(yán)格的遵守種種器具。這個(gè)吧,見(jiàn)仁見(jiàn)智。凡所有種種措施及設(shè)備都是為了保證培養(yǎng)操作過(guò)程中無(wú)菌,減少感染的機(jī)率;試劑耗材保證無(wú)菌無(wú)內(nèi)毒素。細(xì)胞房也是這么一個(gè)措施而已,其它試劑耗材也是;我們沒(méi)有專(zhuān)門(mén)的細(xì)胞房也這么養(yǎng)。

并不是說(shuō)走夜路就一定會(huì)遇到鬼,當(dāng)然走多了遲早遇到,如果總是遇不到,這個(gè)人運(yùn)氣一定很好——。

剛開(kāi)始我們實(shí)驗(yàn)室也是沒(méi)有的生物安全柜和細(xì)胞房,拖鞋什么的也沒(méi)辦法,沒(méi)有加抗生素,照樣養(yǎng)得好好的。但是,交叉養(yǎng),還是需要注意,一是時(shí)間上分隔開(kāi)來(lái):每天細(xì)胞培養(yǎng)先操作。其它細(xì)菌之類(lèi)操作靠后,且操作后消毒酒精臺(tái)面消毒,紫外照射1小時(shí)。二是其它操作要小心,避免帶入污染。當(dāng)然,如果有必要加抗生素,還是盡早加,比細(xì)胞污染了再去搶救要來(lái)得好。

(算是順便整理了一下,屬于入門(mén)級(jí)別的。)

 

@geraldorjerry:你好,你的意思是紫外線照過(guò)之后,實(shí)驗(yàn)操作開(kāi)始了,如果萬(wàn)一發(fā)現(xiàn)少拿了什么,就直接酒精噴一下再放進(jìn)去是嗎

@llh1245:有時(shí)確實(shí)是忘記,ZUI怕的就是那種實(shí)驗(yàn)已經(jīng)做到一半忘記了的,或者發(fā)現(xiàn)東西不夠用的。我們一般是這樣處理:耗材、移液槍還有金屬器皿之類(lèi)的,可以噴一下酒精放進(jìn)來(lái),等酒精風(fēng)干一下,注意不要和其它東西混雜。反正一般細(xì)胞的也有外包裝,里面已經(jīng)是無(wú)菌無(wú)內(nèi)毒素。如果是試劑,那就是直接從冰箱拿出來(lái)放進(jìn)來(lái)就是。(如果只是實(shí)驗(yàn)還沒(méi)有真的開(kāi)始,把漏掉的東西加上,再照30分鐘就是。)

 

@姚麗佳:請(qǐng)問(wèn)傳代前,經(jīng)過(guò)胰酶處理后,加了培養(yǎng)基后不用離心直接分瓶嗎?那后面培養(yǎng)的時(shí)候不就含有胰蛋白酶了嗎?不會(huì)產(chǎn)生影響嗎?

@llh1245:是的,不用離心直接分瓶。之后加入含血清的培養(yǎng)基中止了胰酶作用。如果是貼壁細(xì)胞,一般第二天就貼壁了。分瓶后第二天再全部換液。如果是半懸浮細(xì)胞,一般都不用胰酶消化,都是直接吹下來(lái)。

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